可能的原因：1、樣本中DNA含量低，水分或多糖衍生物含量高?？蓢L試加倍樣本的使用量。注意每增加50 mg樣本的用量，請相應減少50 μl BufferPL的用量。2、樣本中酚或者粘多糖含量太高，沉淀物中帶走了DNA。選擇植物/真菌DNA試劑盒（Simgen Cat. No. 3200050）提取DNA。3、選用了衰老的植物葉片。衰老的葉片中DNA含量會嚴重降低，...... 查看回答 ​

純化得到的DNA中RNA含量過高。如果是從鮮活的樣本中提取DNA，可在加入BufferPL時同步加入2 μl RNase A貯存液（Simgen Cat. No. 8001001，用戶自備），以減少RNA的殘留。...... 查看回答 ​

1、純凈的DNA的A260/A230比值應該在1.8-2.5之間，如果A260/A230嚴重偏離該范圍，請注意觀察純化柱上的硅膠膜是否殘留有植物色素。如果色素殘留較為嚴重，請在BufferWB洗滌純化柱后再增加1~2次無水乙醇洗滌（在純化柱中加入600μl無水乙醇，12000 rpm 離心30秒）。2、）錯誤地使用了Buffer WA和Buffer WB的洗滌順序。確保按正...... 查看回答 ​

1、鹽分殘留過多。注意Buffer WA和Buffer WB的洗滌順序，確保按正確的順序洗滌純化柱。2、乙醇殘留過多。注意高速空離步驟不可省略，并且空離后的核酸純化柱應小心取出，避免倒置，以免使2 ml離心管管底的殘留濾液接觸到核酸純化柱。3、使用了過多的DNA用作PCR模板。通常50 μl PCR反應體系中加入100-500 ng DNA作為模板（單拷貝基因）比較適宜。...... 查看回答 ​

1）樣本被反復凍融多次。盡量避免反復凍融樣本，或者冷凍貯存前先將樣本分割成小塊后再凍存。...... 查看回答 ​