單位定義

74℃，30min，使10 nm dNTP摻入酸不溶性沉淀物所需要的酶量定義為1個活力單位。

活性檢測條件：50 mM Tris-Hcl（pH 9.0, 25℃）,50 mM NaCl, 5 mM MgCl₂,0.2 mM each dNTPs(包括[3H]-Dttp), 200 μg/ml 活化的小牛胸腺DNA和0.1 mg/ml BSA。

質量控制

SDS-PAGE 檢測純度大于99%。經檢測無外源核酸酶活性，PCR方法檢測無宿主DNA殘留，能有效擴增人類基因組中的單拷貝基因。

PCR體系成分

1. 模板DNA的純度：很多殘留的核酸提取試劑會影響PCR反應，包括蛋白酶、蛋白變性劑(比如SDS、胍鹽)、高濃度鹽(KAc、NaAc、辛酸鈉等)和高濃度EDTA等。純度不高的模板（比如煮沸法獲取的模板）用量請勿超過PCR反應體系的1/10（比如50 μl反應體系中加入模板的體積不應超過5μl）。如果模板DNA純度太差，可使用新景（Simgen）PCR清潔試劑盒（Cat. No.2101050）對模板DNA進行純化及濃縮。經新景（Simgen）PCR清潔試劑盒純化后的模板使用量可多至PCR反應體系體積的1/2。

2.模板DNA用量：極微量的DNA也可以作為PCR摸板，但為保證反應的穩定性，50μl體系建議使用10⁴拷貝以上的靶序列作為模板。模板 DNA 的推薦使用量：

人基因組 DNA：0.05 μg~0.5 μg/50 μl PCR反應體系

大腸桿菌基因組 DNA：10 ng~100 ng/50 μl PCR反應體系

λ DNA：0.5 ng~5 ng/50 μl PCR反應體系

質粒DNA：0.1ng ~ 10 ng/50 μl PCR反應體系

如需用擴增產物作為模板再擴增，應至少將擴增產物稀釋1,000至10,000倍后再作為模板使用，否則可能會出現涂抹條帶或無特異性條帶。

3. 引物濃度：一般每條引物配制的濃度為10 μM (50×)，工作濃度為0.2 μM。引物過量可能會出現非特異性擴增，引物過少則可能會降低擴增效率。